Séquençage par spectrométrie de masse

Séquençage par spectrométrie de masse

Voir aussi Séquençage des protéines

La spectrométrie de masse MS/MS permet de déterminer la séquence des peptides sur quelques dizaine d'acides aminés. Couplé avec des techniques de digestion (enzymatiques ou chimiques) et avec des techniques de séparation (chromatographie en phase liquide à haute performance par exemple), il est possible de caractériser une protéine.

Sommaire

Principe de la fragmentation

La fragmentation est le processus permettant de séparer chaque acide aminé d'un peptide. Pour des raisons de stabilité des liaisons, les séquences polypeptidiques se clivent préférentiellement au niveau des liaisons peptidiques. Il existe cependant des mécanismes complexes qui produisent d'autres types ruptures de liaison, ce qui peut rendre difficile la lecture des spectres de masses et la détermination de la séquence.

Spectrométrie de masse MS/MS
Cellule collision.png

Pour fragmenter les peptides, on utilise soit plusieurs analyseurs couplés en série (spectromètre de type triple quadripoles QqQ ou de type quadripole-temps de vol Q-TOF) ou un analyseur capable de réaliser plusieurs analyses en série (spectromètre de masse de type trappe ionique IT ou de type résonance cyclotronique FT-ICR).

  • Le premier analyseur permet de sélectionner un ion à fragmenter (appelé "ion parent") et d'exclure tous les autres ions présents.
  • Cet ion parent est fragmenté, en général par collision avec un gaz inerte (c'est-à-dire qui ne réagit pas chimiquement avec l'ion parent) dans une cellule de collision. Cette fragmentation permet de "casser" les liaisons moléculaires, en particulier les liaisons peptidiques, et de produire des "ions fils".
  • Les ions fils sont ensuite séparés par le second analyseur puis détectés.
Mode d'analyse possible

Il existe plusieurs mode d'analyse en spectrométrie de masse en tandem :

  • Fragment ion scan (ou Product ion scan' ou Daughter scan)
Dans ce mode, un ion parent de rapport m/z donné est sélectionné. Il est fragmenté puis l'ensemble de la gamme de masse est balayée pour analyser les ions fils produits.
  • Precursor ion scan (ou Parent scan)
Dans ce mode, un seul ion fils de rapport m/z donné est analysé. L'ensemble de la gamme de masse des ions parents est balayé. Ce mode permet d'analyser les ion parents qui produisent spécifiquement un ion fils donné.
  • Neutral ion scan
Dans ce mode, les ions parents et les ions fils sont analysés sur l'ensemble de la gamme de masse. On choisit un masse m1, on balaye les ions parents sur l'ensemble de la gamme de masse et l'on analyse les ions fils produits de masse m2-m1. Ce mode permet d'étudier les ions parents qui peuvent perdre un fragment neutre (et qui ne peut donc pas être analaysé par le second balayage). Par exemple, on peut analysé les alcools en effectuant recherchant une différence de masse de 18 Da.
  • Sans balayage
Dans ce mode, la masse de l'ion parent et de l'ion fils est déterminé. Ce mode est utilisé en quantification pour mesurer la quantité d'une molécule donnée.
Type de fragmentation

Les fragmentations peuvent être classé en fonction de leurs types :

  • Fragmentation spontanée des ions métastables ou fragmentation induite par collision sur une surface (SID Surface Induced Dissociation), avec un gaz inerte (CID Collision Induced Dissociation) ou un gaz réactif (RIM Reactant Ion Monitoring)
  • Fragmentation de haute énergie (par exemple avec un TOF/TOF), produisant beaucoup de rupture de liaisons, ou fragmentation de basse énergie, minimisant les ruptures de liaisons non peptidiques.
Stabilité des ions

En fonction de l'énergie interne des ions, les ions se fragmentent à différents temps de vie :

  • ion stable : plus de 10-6 s
  • ion métastable : entre 10-6 et 10-7 s
  • ion instable : moins de 10-7 s

Série de fragmentation

Types de fragmentation a, b, c et x, y, z
M = M(n AA) + M(H) + M(OH)
Code à 1 lettre Code à 3 lettres Acide aminé Masses Acides aminés
modifiés
A Ala Alanyl 71 113 (Acétylation)
297 (Biotinylation)
C Cys Cystyl 103 160 (Carbamidométhylation)
161(Carboxyméthyl)
174 (Propionamidation)
202 (NIPCAM)
208 (S-pyridyléthylation)
D Asp Aspartyl 115 129 (Méthylestérification)
137 (Sodiation)
E Glu Glutamyl 129 111 (Pyro-glu)
143 (Méthylestérification)
151 (Sodiation)
F Phe Phénylalanyl 147 -
G Gly Glycyl 57 -
H His Histidyl 137 153 (Oxydation)
I Ile Isoleucyl 113 -
K Lys Lysyl 128 255 (SMA)
L Leu Leucyl 113 -
M Met Méthionyl 131 147 (Oxydation)
163 (Sulfonation)
N Asn Asparagyl 114 -
P Pro Prolyl 97 -
Q Gln Glutamyl 128 111 (Pyro-glu en N-term)
R Arg Arginyl 156 -
S Ser Séryl 87 167 (Phosphorylation)
T Thr Thréonyl 101 181 (Phosphorylation)
V Val Valyl 99 -
W Trp Tryptophanyl 186 206 (Oxydation)
Y Tyr Tyrosyl 163 243 (Phosphorylation)


Avec des modifications N terminale
Modification Masse
Acétylation + 42 Da
Biotinylation + 226 Da
Carbamylation + 43 Da
Formylation + 28 Da
SMA + 127 Da


Avec des modifications C terminale
Modification Masse
Méthylestérification + 14 Da
Sodiation + 22 Da

Fragmentation au niveau de la liaison peptidique

Fragmentation d'une seule liaison

Fragmentation N terminale
Série d'ions a

La fragmentation de la série a produit des ions aldimines :

Fragmentation de la série a
M = M(n AA) + M(H) - M(CO)
  = M(n AA) - 27

La série a* dérive de la série a par la perte d'un groupe NH3 :

M = a - M(NH3)
  = a - 17

La série a0 dérive de la série a par la perte d'un groupe H2O :

M = a - M(H2O)
  = a - 18
Série d'ions b

La fragmentation de la série b produit des ions acylium :

Fragmentation de la série b
M = M(n AA) + M(H)
  = M(n AA) + 1

La série b* dérive de la série b par la perte d'un groupe NH3 :

M = b - M(NH3)
  = b - 17

La série b0 dérive de la série b par la perte d'un groupe H2O :

M = b - M(H2O)
  = b - 18
Extrémité N terminale

Le fragment peptidique de plus faible poids moléculaire de la série b correspond à l'extrémité N terminal du peptide parent. Il correspond à la formule :

    R
NH2-CH-CO+

et il donne un pic avec un rapport m/z :

m/z = M(H) + M(aa)
    = M(aa) + 1
Extrémité C terminale

Le fragment peptidique de plus haut poids moléculaire de la série b correspond à l'extrémité C terminal du peptide parent [M+H]+. Il correspond à la formule :

         R
NH2-...-(CH)-...-CO+

La différence de masse entre ce fragment et le peptide parent correspond donc au dernier acide aminé aan :

m/z = M(ion parent M[M+H]+) - M(fragment peptidique)
    = ( M(H) + ΣM(aa) + M(aan + M(OH) + M(H+) ) - ( M(H) + ΣM(aa) )
    = M(aan ) + 18

En particulier, dans le cas d'une digestion trypsique, l'acide aminé C terminal correspond à une lysine ou une arginine. En fonction de cet acide aminé, on observe un pic qui apparait aux différence suivante par rapport au rapport m/z de l'ion parent [M+H]+ :

m/z = 146 pour la lysine

et

m/z = 174 pour l'arginine
Série d'ions c

La fragmentation de la série c produit des ions amino :

Fragmentation de la série c
M = M(n AA) + M(H) + M(NH3)
  = M(n AA) + 18
Fragmentation C terminale
Série d'ions x

La fragmentation de la série x produit des ions acylium :

Fragmentation de la série x
M = M(n AA) + M(CO) + M(OH)
  = M(n AA) + 45
Série d'ions y

La fragmentation de la série y produit des ions amino :

Fragmentation de la série y
M = M(n AA) + M(2H) + M(OH)
  = M(n AA) + 19

La série y* dérive de la série y par la perte d'un groupe NH3 :

M = y - M(NH3)
  = y - 17

La série y0 dérive de la série y par la perte d'un groupe H2O :

M = y - M(H2O)
  = y - 18
Extrémité C terminale

Le fragment peptidique de plus faible poids moléculaire de la série y correspond à l'extrémité C terminal du peptide parent. Il correspond à la formule :

     R
NH3+-CH-COOH

et il donne un pic avec un rapport m/z :

m/z = 2M(H) + M(aa) + M(OH)
    = M(aa) + 19

En particulier, dans le cas d'une digestion trypsique, l'acide aminé C terminal correspond à une lysine ou une arginine. En fonction de cet acide aminé, on observe un pic aux valeurs :

m/z = 147 pour la lysine

et

m/z = 175 pour l'arginine
Extrémité N terminale

Le fragment peptidique de plus haut poids moléculaire de la série y correspond à l'extrémité N terminal du peptide parent. Il correspond à la formule :

          R
NH3+-...-(CH)-...-COOH

La différence de masse entre ce fragment et l'ion parent [M+H]+ correspond donc au premier acide aminé aa1 :

m/z = M(ion parent M[M+H]+) - M(fragment peptidique)
    = ( M(H) + ΣM(aa) + M(aa1 + M(OH) + M(H+) ) - ( 2M(H) + ΣM(aa) + M(OH) )
    = M(aa1 )
Série d'ions z
  • La fragmentation de la série z produit des carbocations :
Fragmentation de la série z
M = M(n AA) - M(NH) + M(OH)
  = M(n AA) + 2

Fragmentation de deux liaisons

Ion de fragmentation interne

Ces ions correspondent au clivage de deux liaisons peptidiques. Ces clivages correspondent en général à des fragmentations de types b et y et forment des ions amino-acylium :

Structure d'un ion amino-acylium
M = M(n AA) + M(2H)
  = M(n AA) + 2

Parfois, les clivages correspondent à des fragmentations de types a et y et produisent des ions amino-iminium :

Structure d'un ion amino-immonium
M = M(n AA) + M(H) - M(CO)
  = M(n AA) - 27
Ion iminium

Lorsque qu'une fragmentation de type a est voisine d'une fragmentation de type y, il se forme un ion iminium :

Structure d'un ion immonium
M = M(AA) + M(H) - M(CO)
  = M(AA) - 27

Les ions iminiums apparaissent dans un spectre MS/MS à des masses inférieurs à 200 Da. Ils permettent de connaître la composition en acide aminé du peptide fragmenté.

Acide aminé Code à 3 lettres Code à 1 lettres Masse Ion iminium dérivé
Acide aspartique Asp D 88 70
Acide glutamique Glu E 102 -
Alanine Ala A 44 -
Arginine Arg R 129 59, 70, 73, 87, 100, 112
Asparagine Asn N 87 70
Cystéine Cys C 76 -
Glutamine Gln Q 101 56, 84, 129
Glycine Gly G 30 -
Histidine His H 110 82, 121, 123, 138, 166
Isoleucine Iso I 86 44, 72
Leucine Leu L 86 44, 72
Lysine Lys K 101 70, 84, 112, 129
Méthionine Met M 104 61
Phénylalanine Phe F 120 91
Proline Pro P 70 -
Sérine Ser S 60 -
Thréonine Thr T 74 -
Tryptophane Trp W 159 77, 117, 130, 132, 170, 171
Tyrosine Tyr Y 136 91, 107
Valine Val V 72 41, 55, 69

Fragmentation des chaînes latérales

Série d'ions d

Un ion de la série d est formé par la perte d'une partie de la chaîne latérale de l'acide aminé C terminal d'un ion de la série a.

Formation des ions de la série d
M = M(AA) + M(H) - M(CO) - M(Rperdu)
  = M(AA) - 27 - M(Rperdu)
Série d'ions v

Un ion de la série v est formé par la perte de la chaîne latérale de l'acide aminé N terminal d'un ion de la série y.

Formation des ions de la série v
M = M(AA) + M(OH) - M(Rperdu)
  = M(AA) + 17 - M(Rperdu)
Série d'ions w

Un ion de la série w est formé par la perte d'une partie de la chaîne latérale de l'acide aminé N terminal d'un ion de la série z.

Formation des ions de la série w
M = M(AA) + M(OH) - M(NH) - M(Rperdu)
  = M(AA) + 2 - M(Rperdu)

Liste des modifications des protéines


Wikimedia Foundation. 2010.

Contenu soumis à la licence CC-BY-SA. Source : Article Séquençage par spectrométrie de masse de Wikipédia en français (auteurs)

Игры ⚽ Нужно сделать НИР?

Regardez d'autres dictionnaires:

  • Spectrometrie de masse — Spectrométrie de masse Pour les articles homonymes, voir MS. La spectrométrie de masse (mass spectrometry ou MS) est une technique physique d analyse permettant de détecter et d identifier des molécules d’intérêt par mesure de leur masse, et de… …   Wikipédia en Français

  • Spectrométrie de masse — Pour les articles homonymes, voir MS. La spectrométrie de masse (mass spectrometry ou MS) est une technique physique d analyse permettant de détecter et d identifier des molécules d’intérêt par mesure de leur masse, et de caractériser leur… …   Wikipédia en Français

  • Sequencage des proteines — Séquençage des protéines Le séquençage des protéines est la détermination de la séquence polypeptidique. Elle est destinée à connaître le nombre, la nature chimique et l ordre de tous les résidus d acides aminés dans un polypeptide. Pour cela, si …   Wikipédia en Français

  • Séquencage des protéines — Séquençage des protéines Le séquençage des protéines est la détermination de la séquence polypeptidique. Elle est destinée à connaître le nombre, la nature chimique et l ordre de tous les résidus d acides aminés dans un polypeptide. Pour cela, si …   Wikipédia en Français

  • Séquençage des protéines — Le séquençage des protéines est la détermination de la séquence polypeptidique. Elle est destinée à connaître le nombre, la nature chimique et l ordre de tous les résidus d acides aminés dans un polypeptide. Pour cela, si la protéine contient… …   Wikipédia en Français

  • Spectre de masse — Spectrométrie de masse Pour les articles homonymes, voir MS. La spectrométrie de masse (mass spectrometry ou MS) est une technique physique d analyse permettant de détecter et d identifier des molécules d’intérêt par mesure de leur masse, et de… …   Wikipédia en Français

  • Spectromètre de masse — Spectrométrie de masse Pour les articles homonymes, voir MS. La spectrométrie de masse (mass spectrometry ou MS) est une technique physique d analyse permettant de détecter et d identifier des molécules d’intérêt par mesure de leur masse, et de… …   Wikipédia en Français

  • Détermination de la séquence polypeptidique — Séquençage des protéines Le séquençage des protéines est la détermination de la séquence polypeptidique. Elle est destinée à connaître le nombre, la nature chimique et l ordre de tous les résidus d acides aminés dans un polypeptide. Pour cela, si …   Wikipédia en Français

  • Proteomique — Protéomique La protéomique désigne la science qui étudie les protéomes, c est à dire l ensemble des protéines d une cellule, organelle, tissu, organe ou organisme à un moment donné et sous des conditions données. Dans la pratique, la protéomique… …   Wikipédia en Français

  • Protéomique — La protéomique désigne la science qui étudie les protéomes, c est à dire l ensemble des protéines d une cellule, d un organite, d un tissu, d un organe ou d un organisme à un moment donné et sous des conditions données. Dans la pratique, la… …   Wikipédia en Français

Share the article and excerpts

Direct link
Do a right-click on the link above
and select “Copy Link”