Melampsora

Melampsora
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Spores de Melampsora sp.
Spores de Melampsora sp.
Classification
Règne Fungi
Embranchement Basidiomycota
Classe Urediniomycetes
Sous-classe Incertae sedis
Ordre Uredinales
Famille Melampsoraceae
Genre
Melampsora
, ( )
Espèces de rang inférieur
  • Melampsora allii-populina Kleb
  • Melampsora lini
  • Melampsora medusae Thümen;
  • Melampsora occidentalis ;
  • Melampsora laricipopulinaKleb,
  • Melampsora populnea,


etc.

Fuctification de Melampsora,  l'une des « rouilles » ici sur peuplier

Fuctification de Melampsora,
l'une des « rouilles » ici sur peuplier

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Melampsora est un genre de champignon Basidiomycota, parasite obligatoire hétéroïque et souvent macrocyclique (infectant successivement plusieurs espèces de plantes, souvent deux espèces différentes au cours de son cycle de développement, l'une étant dite « hôte alternant » ou « hôte écidien » par rapport à l'autre).
Il occasionne des maladies fongiques dites "rouilles" qui prennent de l'importance en France parmi les maladies foliaires, notamment chez le peuplier[1]. Ce nom vient de l'aspect conféré aux feuilles par la fructification (urédosores) du champignons en forme de ponctuation jaunâtre à orangées pouvant recouvrir toute la feuilles et qui évoque les points de rouilles sur le fer et donne aux arbres au printemps (vers le mois de mai dans l'hémisphère nord) un aspects entièrement roux (La rouille la plus connue du public est la « rouille du peuplier » qui s'est fortement développée en France depuis les années 1990. Dans les cas de forte infection, une défeuillaison précoce est observée, dès juillet parfois[2].
Melampsora semble dans certains cas (monocultures, alignements de pépinières notamment) pouvoir déjouer les défenses immunitaires naturelles des arbres (par exemple les composés phénoliques antifongiques qui permettent normalement aux peupliers, bouleaux ou saules en bonne santé de ne pas être infectés par la plupart des champignons)[3].

Les rouilles touchent souvent plusieurs espèces-hôtes et elles sont favorisées par les monocultures, et par les transfert d'un site à l'autre, d'une région à l'autre ou d'un continent à l'autre de « matériel végétal » de reproduction [4], surtout quand on les introduit dans un contexte édaphique (microclimats humides) qui leur convient. Leur caractère pathogène semble freiné par la diversité génétique de la population hôte, mais dépend aussi d'interaction avec de nombreux facteurs écoépidémiologiques[5] et climatiques (La température semblant être un des facteurs clé d'expression de ce parasite foliaire et de gravité des symptômes[6], le contexte de réchauffement climatique pourrait augmenter les risques de diffusion d'épidémies de rouille).

Sommaire

Symptômes

Rameau dont les feuilles portent les symptômes d'une infection fongique par Melampsora
Melampsora en train de fructifier, sur le dessous d'une feuilles de peuplier infectée par Melampsora larici-populina uredosori

Sur les peupliers[7], et plus rarement saule ou bouleau ;

  • coloration jaune des feuilles de résineux ou d'autres plantes-hôtes au début du printemps, jaune orangée des feuilles de peuplier en été
  • mauvaise lignification des rameaux,
  • retard de croissance et faible croissance
  • retard dans le développement racinaire
  • décolorations et nécroses des feuilles, suivie d'une éventuelle défeuillaison précoce

Cycle biologique du champignon

Le cycle annuel passe par deux formes :

  1. une forme printanière et estivale se développant sur les feuilles vivantes, à partir des téleutospore (forme hibernante du champignon) qui auront germé en produisant des basidiospores, lesquels transportées par le vent, contamineront le premier hôte (ex : alliacées ou aiguilles de conifères). De là, des écidiospores seront produites, et aéroportées dans l'environnement. Celles qui tomberont sur des feuilles de peupliers non résistants les contamineront en produisant des tubes germinatifs pénétrant les feuilles par les stomates. Après quelques semaines, le champignon fructifie en produisant des urédosores
  2. puis un nouveau stade d'hivernage se produira avec la forme dormante du champignon, sous forme de taches groupées brun-noires (téleutosores ou téleutospores) sur les feuilles tombées au sol, mais aussi sur les bourgeons ou l'écorce.

Les rouilles à Melampsora sont réputées devoir accomplir leur cycle de développement sur deux hôtes différents (peuplier en l’occurrence et une autre plante (herbacée ou arbre) ;

  • Plantes de la famille des ails pour Melampsora alliipopulina[2] ;
  • mélèze pour Melampsora laricipopulina[2] et ses 4 groupes de races physiologiques (E1, E2, E3, E4) ;
  • divers hôtes (dont mélèze) pour Melampsora medusae[2] réputé être d'origine nord-américaine, mais maintenant présent dans toute l'Europe[7]. Ce champignon est réputé favorisé par la chaleur humide (il est en France depuis les années 1990 surtout actif dans le midi, mais pourrait donc peut-être gagner du terrain avec le réchauffement climatique s'il ce dernier est accompagné d'une pluviométrie printanière ou estivale plus élevée) ;

Les spores du champignon peuvent être aéroportées (par le vent, jusqu'à plusieurs kilomètres de distances), ou par le transports de plants ou matériels contaminés en provenance de pépinières, ou via des feuilles ou de la terre transportées par les engins de chantiers forestiers (en hiver le champignon hiverne sous forme d'une croute noirâtre sur les feuilles mortes)[2].

Les rouilles ont fait notamment d'importants dégâts dans les parcelles de populicultures intensives de clones à croissance rapide (peuplier surtout, mais aussi résineux en monocultures tels que le mélèze[8],[2].

Pathogénicité, écoépidémiologie

Selon le Ministère français de l'agriculture, « La sensibilité d’une peupleraie aux rouilles dépend essentiellement des cultivars qui la composent » [1].
Des organismes de recherche tels que l'INRA en France ont régulièrement produit des hybrides de peupliers initialement résistants à la rouille, mais la « rouille du peuplier » se montre capable d'évoluer rapidement par le jeu des mutations au sein des « races physiologiques » qui constituent chaque espèce de Melampsora. Ce champignon s'est ainsi rapidement propagé dans les populicultures (dans toute la France il y a plusieurs décennies), alors qu'il ne fait pratiquement pas de dégâts chez les peupliers sauvages ou subspontanées mélangées.
Dans les années 1990, suite à la diffusion de clones peu variés (variété dont par exemple Unal et Raspalje Boelare et surtout Beaupré), auxquels il s'est adapté dès 1994, il a fait d'importants dégâts (allant de fortes défoliation avec retards de croissance à la mort des arbres). Ayant évolué, il s'est montré capable d'infecter la plupart des cultivars produits par l'INRA pour lui résister (notamment le Beaupré)[2]. Les arbres, faute de réserves pour l'hiver sont affaiblis et peuvent alors mourir d'affections primaires (ex :chancre bactérien du peuplier (infection bactérienne à Xanthomonas populi), maladie décrite pour la première fois en 1958[9]) ou secondaires (pathogènes et parasites « de faiblesse » avec chez le peuplier :

  • Discosporium populeum[2].
  • Dothichiza (champignon normalement bloqué par les tissus corticaux, mais profitant des plaies (de taille d'élagage, de cassures, chancres ou fentes de l'écorce ou cicatrices foliaires). Ce champignon est connu sous deux formes : sa forme sexuéenommée Cryptodiaporthe populea (Sacc.) Butin et sa forme asexuée nommée Discosporium populeum (Sacc.) Sutton (forme asexuée)[9]
  • Cytospora(maladie fongique due à Cytospora chrysosperma)[9]

Plusieurs facteurs de risques ont été identifiés par les experts et les populiculteurs eux-mêmes ainsi que par les organismes et réseaux responsables de la santé des forêts depuis les années 1990[2] :

  • utilisation de cultivars réputés sensibles aux rouilles
  • monospécificité de la populiculture
  • peuplements situés à proximité d'autres hôtes du champignon (mélèzes notamment)
  • Conditions climatiques (Printemps frais et/ou très humide), vents violents ou très peu de vent
  • conditions microclimatiques (populicultures situés en fond de vallon] peu aérés ou peu ensoleillés ou à brouillards persistants)
  • dissémination par du matériel végétal contaminé lors de la plantation (ou par engins ou outils contaminés dans une parcelle infectée ?)
  • excès d'azote[1] dans le sol
  • déficit en potassium[1] dans le sol
  • le mode de production par clonage via plançons, ainsi que la déshydratation des plançons durant leur transport et « mise en jauge » pourraient aussi favoriser le développement de pathogènes d'accompagnement (parasites d'affaiblissement...).

En France

Le champignon est présent partout[2], mais il ne produit des dégâts (parfois spectaculaires) que

Aspects génétiques

Le peuplier étant une essence d'« intérêt économique », et ayant fait l'objet de nombreux essais de transgénèse (arbres OGM), ce champignon pathogène de nombreuses variétés et hybrides de peupliers a aussi retenu l'attention des généticien.

  • Il a fait partie des premiers à être séquencés par le Genoscope [10]. C'est le premier pathogène d'un arbre à avoir été séquencé[10].
  • Les généticiens tentent d'élucider les mécanismes d'hybridation naturelle des peupliers, y compris en terme paléobotanique[11], la localisation des gènes de résistance[12], et les mécanismes moléculaires de la résistance naturelle (mais souvent provisoire en situation de grande culture) au Melampsora, dont chez Populus trichocarpa[13],[14],[15]

Aspects phytosanitaires

L'analyse (y compris génétique) des formes connues des rouille Melampsora pathogènes a révélé depuis les années 1990 un ensemble complexe d'espèces, souches (races pour les anglophones) et pathotypes, en évolution constante et intéragissant avec plusieurs espèces de leur environnement.
Les contexte de monocultures intensive (cultures énergétiques, TCR, TTCR pour la papeterie, ou populicutltures intensive pour production de bois) ont nettement favorisé les « phases épidémiques »[1], surtout dans les régions (comme la Picardie) où les populicultures étaient dominées par un ou deux cultivars seulement[1]. En cultivant les arbres en monoculture, on a en quelque sorte aussi cultivé certains de leurs pathogènes. Ainsi de nouveaux pathotypes de rouilles ont récemment surgi au Royaume-Uni, « apparemment en réponse à la pression de sélection à long terme des plantations de certains clones. Des insectes ravageurs ont été trouvés sur tous les sites touchés, mais généralement sans qu'ils aient causé de dommages significatifs »[4].

Pour une souche donnée de Melampsora, et toutes choses égales par ailleurs, il existe indiscutablement de fortes différences de sensibilité des clones à ce champignon[9], mais le champignon qui dans la nature co-évolue avec ses hôtes se trouve ici face à des milliers de clones (qui n'évoluent pas (ou très peu) de clone à clone ou durant leur courte vie), le champignon parasite a donc plus de chances de rapidement contourner les défenses de son hôte potentiel. Et effectivement, après les échecs successifs de plusieurs générations de souches et clones de peupliers initialement déclarées résistants par les organismes qui les ont créé (Inra en France), les experts forestiers reconnaissent maintenant, en raison des capacités d'adaptation par mutation de ce champignon qui a une phase sexuée et qui produit chaque année des milliards de spores que les producteurs de cultivars dits résistants à la rouille ne peuvent pas garantir cette résistance à moyen ou long terme. De plus, on a montré que des souches de Melampsora normalement adaptées à des environnement sombres et humides ont par exemple réussi à rapidement s'adapter à une exposition plus intense à la lumière et aux UV solaires[16]. Pour les mêmes raisons, il pourrait également produire des souches résistantes aux divers pesticides fongicides utilisés en populiculture depuis le milieu du XXe siècle. « Le cultivar « miracle » n’existe pas et n’existera jamais (les interaméricains Beaupré et Boelare étaient considérés comme les plus résistants dans les années quatre-vingt et sont aujourd’hui les plus sensibles à la race E4) »[2].

D'autres maladies proches (Septoria musiva et S. populicola), responsables de taches foliaires, de chancres et probablement de la mort de peupliers sont aussi en extension aux États-Unis et au Canada, « probablement en raison des transports de matériel de multiplication »[4].

Toutefois, à la différence des rouilles qui infectent les saules, dont certaines attaquent les tiges et jeunes pousses en y complétant leur cycle végétatif, sans avoir besoin d'un hôte secondaire, les rouilles du peuplier semblent toutes nécessiter un second hôte[4]. Ceci laisse penser que de « nouvelles » formes de cultures plus hétérogènes et mélangées, plus riches en biodiversité, avec des méthodes de type Prosilva pourraient peut être diminuer les risques de contagion d'arbre à arbre, bien qu'au détriment des facilités culturales et des taux exceptionnels de croissance qui avaient pu être obtenus par la sélection de clones à croissance très rapide.

Pour les populiculteurs, on cherche a créer des tests permettant d'anticiper le degré de pathogénicité d'une infection[17] et d'identifier des gènes de résistance (que le champignon, par ses rapides mutations semble toutefois pouvoir souvent assez rapidement contourner dans les situations de grandes monocultures au moins)

Prévention, prophylaxie

Les solutions recommandées par les organismes encourageant ou encadrant la populiculture est de :

  • « diversifier au maximum les cultivars tant au niveau de la parcelle qu’à l’échelle régionale »[2] ;
  • enterrer les feuilles tombées au sol (car porteuses de la forme dormante du champignon en hiver [2] ;
  • Conserver une bonne aération de la peupleraie en ne serrant pas trop les plants et le cas échéant en égalant les arbres pour que l'air et la lumière circulent suffisemment[2] ;
  • En cas d'attaque, le ministère de l'Agriculture et l'INRA recommandent d'éliminer les arbres infectés pour « réduire les risques de nouvelles contaminations »[9].
  • la lutte chimique est aussi pratiquée, avec pulvérisation par hélicoptère, à la poudreuse ou au "canon atomiseur", qui doit alors être faite dès les premières pustules sur les feuilles de peuplier selon certaines recommandations[2], mais le traitement n'est pas curatif (en particulier par les arbres attaqués plusieurs années de suite), il ne peut avoir qu'un effet préventif[2] et ne dure que 4 à 5 semaines[2].
  • pour limiter le risque d'infection par Melampsora medusae, en cas d'arrosage des plants, préférer un arrosage au pied, sans mouiller le feuillage[7].

En Europe, les pesticides autorisés pour cet usage sont régulés par la directive Directive Européenne 2000/29/CE

En France, ce champignon fait partie des organismes contre lesquels certaines mesures de lutte sont obligatoires [18].
Les plants présentant des symptômes en pépinière et chez les revendeurs doivent être signalés au SRPV ou à la DRAF.
Sous réserve de changement de réglementation[19], la règlementation n'autorise en France que deux pesticides en arboriculture et sylviculture contre ce champignon[2] ;

...qui peuvent poser problème pour la santé des animaux (gibier notamment) ou d'autres espèces de champignon utiles aux arbres (tous les arbres vivent en symbiose avec des champignons). Des risques d'apparition de résistance aux fongicides existent aussi.

Voir aussi

Articles connexes

Liens externes

Bibliographie

  • (fr) Afocel, Fiche d’Information forêt n° 667 de février 2003. DSF (2002) – Les rouilles des peupliers en 2001. Informations techniques n° 49(mars 2002) p.14-16.
  • (fr) Abgrall J.-F. et Soutrenon A., Les rouilles à Melampsora des peupliers. La forêt et ses ennemis – Cemagref Grenoble, p.337-340.
  • (fr) Berthelot A., Bouvet A., Gastine F.,Roy B. et Servant H.(2003), La protection phytosanitaire du cultivar « Beaupré » est-elle efficace ?
  • (fr) Gumez J.-L., Lachaume R. et Pinon J.(2000) Historique de l'émergence de la race E4 de Melampsora laricipopulina. Conditions de son développement en France dans les régions Nord-Pas-de-Calais et Picardie– Enseignements à en tirer , Bulletin du Centre populicole du Hainaut (Belgique), n° 1 p.3-76.
  • (en) Laurans F, Pilate G, 1999. Histological aspects of a hypersensitive response in poplar to Melampsora larici-populina. Phytopathology, 89, 233-238
  • (fr) Maugard F.,Pinon J., Soutrenon A. et Taris B.(1999) – Les maladies foliaires des peupliers –Plaquette d’information du Département de la santé des forêts.

Références

Références taxonomiques

Autres références et notes

  1. a, b, c, d, e et f Ministère (français) de l'agriculture Les Maladies foliaires des peupliers, Information Santé des forêts, juillet 2006, 6 pp.
  2. a, b, c, d, e, f, g, h, i, j, k, l, m, n, o, p, q et r Abgrall J.-F. et Soutrenon A, Fiche sanitaire Rouilles à Melampsora des peupliers
  3. J. Hakulinen, R. Julkunen-Tiitto, Variation in leaf phenolics of field-cultivated willow (Salix myrsinifolia) clones in relation to occurrence of Melampsora rust ; En ligne 2008-06-28 ; DOI: 10.1046/j.1439-0329.2000.00184.x Issue Forest Pathology Forest Pathology Volume 30, Issue 1, pages 29–41, February 2000 (Résumé, anglais)
  4. a, b, c et d DJ Royle, ME Ostry, Disease and pest control in the bioenergy crops poplar and willow ; Biomass and Bioenergy Volume 9, Issues 1-5, 1995, Pages 69-79 International Energy Agency Bioenergy Agreement Progress and Achievements 1992/94 doi:10.1016/0961-9534(95)00080-1 (Résumé, en anglais)
  5. C. S. Prakash et B. A. Thielges, Resistance and Tolerance Pathogenic variation in Melampsora medusae leaf rust of poplars, Euphytica, 1987, Volume 36, Number 2, 563-570, DOI: 10.1007/BF00041503 (Résumé, anglais)
  6. C. S. Prakash, B. A. Thielges, Interaction of geographic isolates of Melampsora medusae and Populus: effect of temperature  ; Revue canadienne de botanique, 1989, 67:(2) 486-490, 10.1139/b89-069 (Résumé)
  7. a, b et c SRPV midi-Pyrénnées, http://www.srpv-midi-pyrenees.com/_publique/sante_vgtx/organismes_nuisibles_et_lutte_obligatoire/fiches/melampsora_medusae.htm « Melampsora medusae Rouille du peuplier »], consulté 201109 24
  8. Pinon J.(2004) Évolution de la rouille du mélèze et conséquences pour le choix et la gestion des cultivars ; Bulletin du Centre populicole du Hainaut (Belgique) n°2 p.7-18.
  9. a, b, c, d et e Ministère de l'agriculture, Les maladies des branches, de la tige et des racines des peupliers, Santé des forêts, juillet 2006
  10. a et b Melampsora larici-populina sur le Site du Genoscope
  11. Eckenwalder JE. 1984. Natural intersectional hybridization between North American species of Populus (Salicaceae) in sections Aigeiros and Tacamahaca. III. Paleobotany and Evolution. Canadian Journal of Botany 62: 336–342.
  12. Ellis J, Dodds P, Pryor T. 2000. Structure, function, and evolution of plant disease resistance genes. Current Opinion in Plant Biology 3: 278–294.
  13. T.-M. Yin, S. P. DiFazio, L. E. Gunter, S. S. Jawdy, W. Boerjan et G. A. Tuskan, http://www.as.wvu.edu/~sdifazio/peer5.pdf Genetic and physical mapping of Melampsora rust resistance genes in Populus and characterization of linkage disequilibrium and flanking genomic sequence] ; New Phytologist (2004), 164 : 95–105 ; doi:10.1111/j.1469-8137.2004.01161.x
  14. Cervera MT, Gusmão J, Steenackers M, Peleman J, Storme V, Vanden Broeck A, Van Montagu M, Boerjan W. 1996. Identification of AFLP molecular markers for resistance against Melampsora laricipopulina in Populus. Theoretical and Applied Genetics 93: 733–737.
  15. Cervera MT, Storme V, Ivens B, Gusmão J, Liu BH, Hostyn V, Van Slycken J, Van Montagu M, Boerjan W. 2001. Dense genetic linkage maps of three Populus species (Populus deltoides, P. nigra and P. trichocarpa) based on AFLP and microsatellite markers. Genetics 158: 787–809.
  16. Prakash, C.S.; Heather, W.A. (1985) Adaption of Melampsora medusae to increasing temperature and light intensities on a clone of Populus deltoides. Canadian Journal of Botany 64, 834-841. (résumé en Français))
  17. Richard C. Hamelin, Richard S. Ferriss, Louis Shain, Bart A. Thielges, Prediction of poplar leaf rust epidemics from a leaf-disk assay ; Revue canadienne de recherche forestière, 1994, 24:(10) 2085-2088, 10.1139/x94-267 (résumé en Français)
  18. Arrêté du 31 juillet 2000 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire NOR : AGRG0001599A J.O. du 31.08.00, p. 13502
  19. La liste des peticides homologués en France pour cet usage est consultable sur le site internet du ministère de l'agriculture e-phy.

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